Ponction veineuse - Venipuncture
En médecine, la ponction veineuse ou ponction veineuse est le processus d'obtention de l' accès par voie intraveineuse dans le but de veineux prélèvement de sang (également appelé phlébotomie ) ou la thérapie intraveineuse . Dans la santé, cette procédure est effectuée par des scientifiques de laboratoire médical , les médecins , certains techniciens ambulanciers , paramédicaux , phlébotomistes , dialyse techniciens et autres membres du personnel infirmier. En médecine vétérinaire , l'intervention est réalisée par des vétérinaires et des techniciens vétérinaires .
Il est essentiel de suivre une procédure standard pour la collecte d'échantillons sanguins afin d'obtenir des résultats de laboratoire précis. Toute erreur dans la collecte du sang ou le remplissage des tubes à essai peut entraîner des résultats de laboratoire erronés.
La ponction veineuse est l'une des procédures invasives les plus couramment pratiquées et est réalisée pour l'une des cinq raisons suivantes :
- obtenir du sang à des fins de diagnostic;
- surveiller les niveaux de composants sanguins;
- pour administrer des traitements thérapeutiques, y compris des médicaments, de la nutrition ou de la chimiothérapie ;
- pour éliminer le sang dû à des niveaux excessifs de fer ou d'érythrocytes ( globules rouges ); ou
- recueillir du sang pour des utilisations ultérieures, principalement la transfusion soit chez le donneur soit chez une autre personne .
L'analyse sanguine est un outil de diagnostic important à la disposition des cliniciens dans le domaine de la santé.
Le sang est le plus souvent prélevé dans les veines superficielles du membre supérieur. La veine cubitale médiane , qui se situe dans la fosse cubitale antérieure au coude, est proche de la surface de la peau sans de nombreux gros nerfs positionnés à proximité. D'autres veines qui peuvent être utilisées dans la fosse cubitale pour la ponction veineuse comprennent les veines céphaliques , basiliques et médianes antébrachiales .
Des quantités infimes de sang peuvent être prélevées par prélèvement au bout du doigt et prélevées sur des nourrissons au moyen d'une piqûre au talon ou dans les veines du cuir chevelu avec une aiguille de perfusion ailée .
La phlébotomie (incision dans une veine) est également le traitement de certaines maladies comme l' hémochromatose et la polyglobulie primaire et secondaire .
Complications
Une étude de 1996 sur les donneurs de sang (une aiguille plus grosse est utilisée pour le don de sang que pour la ponction veineuse de routine) a révélé que 1 donneur sur 6 300 avait subi une lésion nerveuse.
Équipement
Il existe de nombreuses façons de prélever du sang dans une veine, et la méthode utilisée dépend de l'âge de la personne, de l'équipement disponible et du type de tests requis.
La plupart des prélèvements sanguins aux États-Unis, au Royaume-Uni, au Canada et à Hong Kong sont effectués avec un système de tube sous vide. Deux systèmes courants sont Vacutainer (Becton, Dickinson et compagnie) et Vacuette (Greiner Bio-One). L'équipement se compose d'un adaptateur en plastique, également appelé tube ou porte-aiguille/embout, d'une aiguille hypodermique et d'un tube à vide. Dans certaines circonstances, une seringue peut être utilisée, souvent avec une aiguille papillon , qui est un cathéter en plastique attaché à une aiguille courte. Dans les pays en développement, le système de tube sous vide est la méthode préférée pour prélever du sang.
Avec tubes sous vide ou à vide
Greiner Bio-One a fabriqué le tout premier tube de prélèvement sanguin sous vide en plastique en 1985 sous la marque VACUETTE. Aujourd'hui, de nombreuses entreprises vendent des tubes à vide car le brevet de cet appareil est désormais dans le domaine public. Ces tubes sont fabriqués avec un volume spécifique de gaz retiré du tube scellé. Lorsqu'une aiguille d'un moyeu ou d'un dispositif de transfert est insérée dans le bouchon, le vide du tube aspire automatiquement le volume de sang requis.
Le système de tube sous vide (ETS) de base se compose d'une aiguille, d'un porte-tube et des tubes sous vide. L'aiguille est fixée au porte-tube par le phlébotomiste avant le prélèvement, ou peut provenir du fabricant en une seule unité. L'aiguille dépasse de l'extrémité du support de tube et comporte une aiguille à chaque extrémité. Après avoir d'abord nettoyé le site de ponction veineuse et appliqué un garrot, le phlébotomiste décapsule l'aiguille fixée au porte-tube, insère l'aiguille dans la veine, puis glisse les tubes sous vide dans le porte-tube, où le bouchon du tube est percé par l'extrémité arrière du aiguille. Le vide dans le tube aspire alors automatiquement le sang nécessaire directement de la veine. Plusieurs tubes à vide peuvent être attachés et retirés à tour de rôle d'une seule aiguille, ce qui permet d'obtenir plusieurs échantillons à partir d'une seule procédure. Ceci est possible grâce au manchon à échantillons multiples, qui est un raccord en caoutchouc flexible sur l'extrémité postérieure de la canule de l'aiguille qui scelle l'aiguille jusqu'à ce qu'elle soit repoussée. Cela empêche le sang de s'écouler librement de l'arrière de l'aiguille insérée dans la veine, car chaque tube à essai est retiré et le suivant empalé. Les réglementations de sécurité de l' OSHA exigent que les aiguilles ou les porte-tubes soient équipés d'un dispositif de sécurité pour couvrir l'aiguille après la procédure afin d'éviter toute blessure accidentelle par piqûre d'aiguille.
Des raccords et des adaptateurs utilisés pour remplir les tubes sous vide des kits d'aiguilles papillon et des seringues sont également disponibles.
Il existe plusieurs jauges d'aiguilles parmi lesquelles un phlébotomiste peut choisir. Les plus couramment utilisées sont les suivantes : une aiguille 21g (sommet vert), une aiguille 22g (sommet noir), une aiguille papillon 21g (étiquette verte), une aiguille papillon 23g (étiquette bleu clair) et une aiguille 25g (orange ou foncée). étiquette bleue) aiguille papillon (cependant, cette aiguille n'est utilisée qu'en pédiatrie ou dans des cas extrêmes car elle est si petite qu'elle peut souvent entraîner une hémolyse de l'échantillon de sang). Il existe également une variété de tailles et de volumes de tubes et de flacons pour différentes exigences de test.
Additifs et ordre de tirage
Les tubes à essai dans lesquels le sang est prélevé peuvent contenir un ou plusieurs additifs. En général, les tests nécessitant du sang total nécessitent des échantillons de sang prélevés dans des tubes à essai contenant une certaine forme de l'anticoagulant EDTA . L'EDTA chélate le calcium pour empêcher la coagulation. L'EDTA est préféré pour les tests hématologiques car il endommage le moins possible la morphologie cellulaire. Le citrate de sodium est l'anticoagulant utilisé dans les échantillons prélevés pour les tests de coagulation. La majorité des tests chimiques et immunologiques sont effectués sur du sérum, qui est produit par coagulation puis séparation de l'échantillon de sang via une centrifugeuse. Ces échantillons sont collectés soit dans un tube sans additif, soit dans un tube contenant un activateur de coagulation . Cet activateur de coagulation peut interférer avec certains dosages , c'est pourquoi un tube simple est recommandé dans ces cas, mais retardera le test. Les tubes contenant de l'héparine de lithium ou de l'héparine de sodium sont également couramment utilisés pour divers tests chimiques, car ils ne nécessitent pas de coagulation et peuvent être centrifugés immédiatement après le prélèvement. Une combinaison de fluorure de sodium et d'oxalate de potassium est utilisée pour les tests de glucose, car ces additifs empêchent à la fois la coagulation et arrêtent la glycose, de sorte que les niveaux de glucose sanguin soient préservés après le prélèvement. Un autre tube spécialisé est un tube de couleur ambre opaque utilisé pour collecter le sang pour les analytes sensibles à la lumière, tels que la bilirubine .
Les tubes à essai sont étiquetés avec l'additif qu'ils contiennent, mais le bouchon de chaque tube est également codé par couleur selon l'additif. Bien que les couleurs varient d'un fabricant à l'autre, les couleurs des bouchons sont généralement associées à chaque additif, comme indiqué ci-dessous. Étant donné que les additifs de chaque tube peuvent être laissés sur l'aiguille utilisée pour remplir les tubes, ils doivent être prélevés dans un ordre spécifique pour s'assurer que la contamination croisée n'affectera pas négativement le test des échantillons si plusieurs tubes doivent être prélevés à la fois. L'« ordre de tirage » varie selon la méthode de collecte. Ci-dessous, dans l'ordre de tirage généralement requis pour la méthode de collecte du système de tubes sous vide (ETS), se trouvent les tubes les plus courants, répertoriant l'additif et la couleur :
| Couleur ou type de bouchon de tube | Additif | Utilisation et commentaires |
|---|---|---|
| Flacon d' hémoculture | Sodium polyanethol sulfonate ( anticoagulant ) et milieux de croissance pour microorganismes | Habituellement tiré en premier pour un risque minimal de contamination. Deux flacons sont généralement collectés lors d'une prise de sang ; un pour les organismes aérobies et un pour les organismes anaérobies . |
| Bleu clair | Citrate de sodium (anticoagulant) | Tests de coagulation tels que le temps de prothrombine (TP) et le temps de thromboplastine partielle (PTT) et le temps de thrombine (TT). Le tube doit être rempli à 100 %. |
| Rouge uni | Aucun additif | Sérum : Activité du complément total , cryoglobulines |
| Or (parfois "tiger top" rouge et gris) | Activateur de caillots et gel séparateur de sérum | Tube séparateur de sérum : Les inversions du tube favorisent la coagulation. La plupart des tests chimiques, endocriniens et sérologiques, y compris l' hépatite et le VIH . |
| Vert foncé | Héparine sodique (anticoagulant) | Tests chromosomiques, typage HLA , ammoniac , lactate |
| menthe verte | Lithium héparine (anticoagulant) | Plasma . Les inversions de tube empêchent la coagulation |
| Lavande ("violet") | EDTA ( chélateur / anticoagulant) | Sang total : CBC , ESR , test de Coombs , anticorps plaquettaires , cytométrie en flux , taux sanguins de tacrolimus et de ciclosporine |
| Rose | EDTA (chélateur / anticoagulant) | Groupement sanguin et compatibilité croisée , test de Coombs direct,charge virale VIH |
| bleu royal | EDTA (chélateur / anticoagulant) | Oligo-éléments, métaux lourds, la plupart des niveaux de médicaments, toxicologie |
| bronzer | EDTA (chélateur / anticoagulant) | Mener |
| gris |
|
Glucose , lactate |
| Jaune | Acide-citrate-dextrose A (anticoagulant) | Typage tissulaire , études ADN, cultures VIH |
| Perle blanche") | Gel séparateur et (K 2 ) EDTA | PCR pour adénovirus , toxoplasme et HHV-6 |
Chez les enfants
L'utilisation de l' iontophorèse à la lidocaïne est efficace pour réduire la douleur et soulager la détresse pendant la ponction veineuse chez les enfants. Il a été démontré qu'un système d'administration de lignocaïne en poudre sans aiguille diminue la douleur de la ponction veineuse chez les enfants. Une anesthésie cutanée rapide peut être obtenue par infiltration anesthésique locale, mais elle peut provoquer de l'anxiété chez les enfants effrayés par les aiguilles ou déformer la peau, rendant l'accès vasculaire plus difficile et augmentant le risque d'exposition aux aiguilles pour les agents de santé. L'anesthésie cutanée peut également être réalisée sans aiguille par application topique d'anesthésiques locaux ou par iontophorèse à la lidocaïne. En revanche, l'anesthésie cutanée non invasive peut être établie en 5 à 15 minutes sans déformer les tissus sous-jacents par iontophorèse à la lidocaïne, où un courant électrique direct facilite la pénétration cutanée des molécules de lidocaïne chargées positivement lorsqu'elles sont placées sous l'électrode positive.
Une étude a conclu que l'administration iontophorétique de lidocaïne était sûre et efficace pour fournir une anesthésie cutanée pour la ponction veineuse chez les enfants de 6 à 17 ans. Cette technique peut ne pas être applicable à tous les enfants. De futures études pourraient fournir des informations sur la dose iontophorétique minimale efficace pour l'anesthésie cutanée chez les enfants et la comparaison de l'efficacité anesthésique et de la satisfaction de l'iontophorèse à la lidocaïne avec des crèmes anesthésiques topiques et une infiltration sous-cutanée.
Les traitements non pharmacologiques de la douleur associée à la ponction veineuse chez les enfants comprennent l' hypnose et la distraction. Ces traitements ont réduit la douleur auto-déclarée et, lorsqu'ils sont combinés à une thérapie cognitivo-comportementale (TCC), la réduction de la douleur était encore plus importante. D'autres interventions ne se sont pas révélées efficaces et il s'agit de la suggestion, de l'expulsion de l'air et de la distraction avec l'encadrement des parents qui ne différaient pas du contrôle de la douleur et de la détresse.
Avec aiguille et seringue
Certains agents de santé préfèrent utiliser une technique seringue- aiguille pour la ponction veineuse. Sarstedt fabrique un système de prélèvement sanguin (S-Monovette) qui utilise ce principe. Cette méthode peut être préférée chez les personnes âgées, les personnes atteintes de cancer, de brûlures graves, d'obésité ou dont les veines sont peu fiables ou fragiles. Comme les seringues sont actionnées manuellement, la quantité d'aspiration appliquée peut être facilement contrôlée. Ceci est particulièrement utile lorsque les veines sont petites et peuvent s'effondrer sous l'aspiration d'un tube sous vide. Chez les enfants ou dans d'autres circonstances où la quantité de sang prélevée peut être limitée, il peut être utile de savoir quelle quantité de sang peut être prélevée avant de la répartir parmi les divers additifs dont le laboratoire aura besoin. Une autre alternative consiste à prélever du sang à partir de canules à demeure.
Hémocultures
Il y a des moments où une collection d'hémocultures est nécessaire. La culture déterminera s'il y a des agents pathogènes dans le sang. Normalement, le sang est stérile. Lorsque vous prélevez du sang sur des cultures, utilisez une solution stérile telle que la Bétadine plutôt que de l' alcool . Cela se fait à l'aide de gants stériles, sans essuyer la solution chirurgicale, sans toucher le site de ponction ou compromettre de quelque manière que ce soit le processus stérile. Il est essentiel que la procédure soit réalisée de manière aussi stérile que possible car la présence persistante de commensaux cutanés dans les hémocultures pourrait indiquer une endocardite mais ils sont le plus souvent trouvés comme contaminants. Il est recommandé d'utiliser une méthode abrasive de préparation de la peau. Cela élimine les couches supérieures des cellules mortes de la peau ainsi que leurs bactéries contaminantes. La povidone-iode est traditionnellement utilisée, mais au Royaume-Uni, une solution à 2 % de chlorhexidine dans 70 % d'éthanol ou d'alcool isopropylique est préférée et il faut lui laisser du temps pour sécher. Le dessus de tous les récipients utilisés lors du prélèvement d'une hémoculture doit également être désinfecté à l'aide d'une solution similaire. Certains laboratoires décourageront activement l'utilisation d'iode là où l'iode est censé dégrader le bouchon en caoutchouc par lequel le sang pénètre dans la bouteille, permettant ainsi aux contaminants de pénétrer dans le récipient.
Le sang est collecté dans des flacons de transport spéciaux, qui ressemblent à des tubes à vide mais de forme différente. Le flacon d'hémoculture contient un milieu de transport pour préserver les micro-organismes présents pendant leur transport vers le laboratoire pour les cultures. Comme on ne sait pas si les agents pathogènes sont anaérobies (vivant sans oxygène) ou aérobies (vivant avec de l'oxygène), du sang est prélevé pour tester les deux. La bouteille aérobie est remplie en premier, puis la bouteille anaérobie est remplie. Cependant, si le prélèvement est effectué à l'aide d'une seringue, le flacon anaérobie est rempli en premier. Si un kit de prélèvement papillon est utilisé, la bouteille aérobie est remplie en premier, de sorte que l'air contenu dans la tubulure soit libéré dans la bouteille contenant de l'oxygène.
Les flacons de prélèvement d'hémocultures spécialement conçus éliminent le besoin de la méthode de prélèvement à la seringue ou au papillon. Ces flacons spécialement conçus ont de longs cols qui s'insèrent dans les supports de tubes sous vide qui sont utilisés pour le prélèvement régulier de ponction veineuse. Ces flacons permettent également la collecte d'autres échantillons de sang via des tubes sous vide, à collecter sans ponction veineuse supplémentaire.
La quantité de sang collectée est critique pour la récupération optimale des micro-organismes. Jusqu'à 10 ml de sang sont typiques, mais peuvent varier selon les recommandations du fabricant du flacon de prélèvement. Les prélèvements chez les nourrissons et les enfants sont de 1 à 5 ml. Si trop peu de sang est collecté, le rapport sang/bouillon nutritif inhibera la croissance des micro-organismes. Si trop de sang est collecté, il existe un risque d'anémie induite par l'hôpital et le rapport sang/bouillon nutritif s'inclinera dans la direction opposée, ce qui n'est pas non plus propice à une croissance optimale.
Les flacons sont ensuite incubés dans des unités spécialisées pendant 24 heures avant qu'un technicien de laboratoire ne les étudie et/ou les teste. Cette étape permet aux très petits nombres de bactéries (potentiellement 1 ou 2 organismes) de se multiplier à un niveau suffisant pour l'identification +/- test de résistance aux antibiotiques. Les flacons d'hémoculture modernes ont un indicateur dans la base qui change de couleur en présence de croissance bactérienne et peut être lu automatiquement par machine. (Pour cette raison, les autocollants à code-barres trouvés sur ces flacons ne doivent pas être retirés car ils sont utilisés par les systèmes automatisés du laboratoire.)
Prélèvement d'échantillons de sang sur des animaux
Des échantillons de sang d'animaux de laboratoire vivants peuvent être prélevés selon les méthodes suivantes :
- Prélèvement sanguin ne nécessitant pas d'anesthésie :
- Veine saphène (rat, souris, cobaye)
- Veine pédieuse dorsale (rat, souris)
- Prélèvement sanguin nécessitant une anesthésie (anesthésie locale/générale) :
- Veine caudale (rat, souris)
- Cisaille de queue (souris)
- Sinus orbitaire (rat, souris)
- Veine jugulaire (rat, souris)
- Canule temporaire (rat, souris)
- Canulation des vaisseaux sanguins (cobaye, furet)
- Veine tarsienne (cobaye)
- Veine ou artère marginale de l'oreille (lapin)
- Procédure terminale :
- Ponction cardiaque (rat, souris, cobaye, lapin, furet)
- Sinus orbitaire (rat, souris)
- Veine cave postérieure (rat, souris)
Le volume de prélèvement sanguin est très important chez les animaux de laboratoire. Toute collecte de sang non terminale sans remplacement de fluides est limitée à 10 % du volume sanguin total circulant chez des animaux adultes sains et normaux en une seule fois et la collecte peut être répétée après trois à quatre semaines. Si des prélèvements sanguins répétés sont nécessaires à de courts intervalles, un maximum de 0,6 ml/kg/jour ou 1,0 % du volume sanguin total d'un animal peut être prélevé toutes les 24 heures. Le volume sanguin estimé chez les animaux adultes est de 55 à 70 ml/kg de poids corporel. Des précautions doivent être prises pour les animaux plus âgés et obèses. Si le volume de prélèvement sanguin dépasse plus de 10 % du volume sanguin total, un remplacement liquidien peut être nécessaire. La solution de Ringer lactate (LRS) est recommandée comme le meilleur remplacement de fluide par les National Institutes of Health (NIH). Si le volume de sang collecté dépasse plus de 30 % du volume sanguin circulatoire total, des précautions adéquates doivent être prises pour que l'animal ne souffre pas d'hypovolémie.
Tests d'alcoolémie
Il est généralement déconseillé d'utiliser de l'alcool isopropylique pour nettoyer le site de ponction veineuse lors de l'obtention d'un échantillon pour un test d' alcoolémie . Cela a été largement lié aux implications juridiques potentielles associées à l'utilisation de nettoyants à base d'alcool qui pourraient théoriquement avoir un impact sur l'analyse. De nombreux kits de collecte d'alcool de police ont été commercialisés qui incorporent un conservateur de fluorure de sodium/oxalate de potassium et des agents nettoyants sans alcool pour assurer une collecte appropriée. L'utilisation de savon et d'eau chaude ou un tampon de povidone iodée sont des alternatives conseillées à l'alcool isopropylique dans ce cas.
Voir également
- Le sang artériel est prélevé d'une artère au lieu d'une veine