MSH3 - MSH3

Structure cristalline de l'hétérodimère MSH2:MSH3 en complexe avec l'ADN ( PDB : 3THX ​). MSH2 et MSH3 se lient pour former MutSβ. Cette structure cristalline montre MutSβ lié à l'ADN contenant une boucle d'insertion de trois nucléotides non appariés.
MSH3
Structures disponibles
APD Recherche orthologue : PDBe RCSB
Identifiants
Alias MSH3 , DUP, MRP1, mutS homologue 3, FAP4
Identifiants externes OMIM : 600887 MGI : 109519 HomoloGene : 1829 GeneCards : MSH3
Orthologues
Espèce Humain Souris
Entrez
Ensemble
UniProt
RefSeq (ARNm)

NM_002439

NM_010829
NM_001311120

RefSeq (protéine)

NP_002430

NP_001298049
NP_034959

Localisation (UCSC) Chr 5: 80.65 – 80.88 Mo Chr 13 : 92.21 – 92.36 Mo
Recherche PubMed
Wikidata
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La protéine de réparation des mésappariements de l'ADN , MutS Homolog 3 (MSH3) est un homologue humain de la protéine bactérienne de réparation des mésappariements MutS qui participe au système de réparation des mésappariements (MMR). MSH3 forme typiquement l' hétérodimère MutSβ avec MSH2 afin de corriger les longues boucles d'insertion/délétion et les mésappariements base-base dans les microsatellites pendant la synthèse d'ADN. Une capacité déficiente pour le ROR se retrouve dans environ 15 % des cancers colorectaux , et des mutations somatiques du gène MSH3 peuvent être trouvées dans près de 50 % des cancers colorectaux déficients en ROR.

Gène et expression

Chez l'homme, le gène codant pour MSH3 se trouve sur le chromosome 5 à l'emplacement 5q11-q12 en amont du gène de la dihydrofolate réductase (DHFR). MSH3 est codé par 222 341 paires de bases et crée une protéine constituée de 1137 acides aminés.

Le MSH3 est généralement exprimé à de faibles niveaux dans plusieurs lignées cellulaires transformées, notamment HeLa , K562 , HL-60 et CEM, ainsi que dans une large gamme de tissus normaux, notamment la rate, le thymus, la prostate, les testicules, l'ovaire, l'intestin grêle, le côlon, leucocytes du sang périphérique, cœur, cerveau, placenta, poumon, foie, muscle squelettique, rein et pancréas. Bien que les niveaux d'expression de MSH3 varient légèrement d'un tissu à l'autre, son faible niveau d'expression répandu indique qu'il s'agit d'un gène « d'entretien » couramment exprimé dans toutes les cellules.

La surexpression de MSH3 a diminué la capacité de MMR. Lorsque MSH3 est surexprimé, des changements drastiques se produisent dans les niveaux relatifs de formation de MutSβ aux dépens de MutSα. MutSα est responsable des mésappariements base-base et des boucles d'insertion/délétion courtes, tandis que MutSβ répare les boucles d'insertion/délétion longues dans l'ADN. Un changement drastique des niveaux relatifs de ces complexes protéiques peut entraîner une diminution de la capacité de MMR. Dans le cas de la surexpression de MSH3, MSH2 s'hétérodimérise préférentiellement avec MSH3 conduisant à des niveaux élevés de MutSβ et à la dégradation de la protéine MSH6 sans partenaire qui se complexe normalement avec MSH2 pour former MutSα.

Interactions

Il a été démontré que MSH3 interagit avec MSH2, PCNA et BRCA1 . Ces interactions forment des complexes protéiques qui sont généralement impliqués dans les activités de suppression tumorale et de réparation de l'ADN.

L'interaction principale de MSH3 implique la formation du complexe MutSβ avec MSH2. MutSβ se forme comme un hétérodimère de MSH2 et MSH3 avec deux régions d'interaction primaires : une région amino-terminale et une région carboxy-terminale . La région N-terminale de MSH3 (acides aminés 126-250) est en contact avec la région N-terminale de MSH2 aa 378-625. Les régions C-terminales se connectent à aa 1050-1128 de MSH3 et aa 875-934 de MSH2. Les régions de liaison sur MSH2 sont identiques lors de la liaison à MSH3 ou MSH6. Les régions de liaison aux nucléotides d' adénine dans MSH3 et MSH2 ne sont contenues dans aucune des régions d'interaction impliquées dans la dimérisation, permettant à MutSβ de se lier à l'ADN et d'effectuer la MMR.

Image externe
icône d'image Sites de liaison MutSβ pour MSH3 et MSH2 Modèle de l'interaction consensus hMSH2 avec hMSH3 ou hMSH6. Les régions d'interaction de hMSH2 avec hMSH3 et de hMSH2 avec hMSH6 sont représentées en gris et elles sont reliées par des lignes qui illustrent la spécificité de chaque région à leur partenaire d'appariement. Les régions de liaison des nucléotides sont représentées par des cases noires. L'emplacement des mutations HNPCC testées dans ces études est illustré par des losanges noirs. La région N-terminale de MSH3 (acides aminés 126-250) est en contact avec la région N-terminale de MSH2 aa 378-625. Les régions C-terminales se connectent à aa 1050-1128 de MSH3 et aa 875-934 de MSH2. Les régions de liaison sur MSH2 sont identiques lors de la liaison à MSH3 ou MSH6.

L'antigène nucléaire de prolifération cellulaire (PCNA) est une protéine impliquée dans le ROR post-réplication. Il a été montré que PCNA se lie à l'hétérodimère MutSβ via un motif de liaison dans le domaine N-terminal de MSH3. Le PCNA lié localise ensuite le complexe MutSβ aux foyers de réplication, indiquant que le PCNA aide à initier la réparation en guidant MutSβ et d'autres protéines de réparation vers des extrémités libres dans l'ADN récemment répliqué.

Fonction

La fonction principale de MSH3 est de maintenir la stabilité du génome et de décréter la suppression tumorale en formant l'hétérodimère MutSβ pour corriger les longues boucles d'insertion/délétion et les mésappariements base-base. Dans le cas de longues boucles d'insertion/suppression, l'ADN est fortement courbé et les paires de bases en aval peuvent devenir non appariées et exposées. MutSβ reconnaît les boucles d'insertion/suppression de 1 à 15 nucléotides ; la liaison aux boucles d'insertion/suppression est obtenue en insérant le domaine de liaison de mésappariement de MSH3 et une partie du domaine de liaison de mésappariement de MSH2 dans le sillon formé par la courbure extrême de l'ADN formée par la boucle d'insertion/suppression.

Image externe
icône d'image Reconnaissance IDL par MutSβ . (a) Une comparaison rapprochée de l'interaction MSH3-IDL et Taq MutS avec une seule base non appariée (ΔT). (b) Domaines de liaison à l'ADN et ADN dans Loop4. Les domaines I et IV de MSH2 sont représentés en vert et jaune, et les domaines MBD et clamp de MSH3 en bleu et orange. (c) Diagramme des interactions protéine-ADN utilisant le même schéma de couleurs qu'en (b). (d) Modèle de remplissage d'espace de quatre IDL et leur interaction avec le domaine I de MSH2 (vert) et MBD de MSH3 (bleu). Les paires de bases entourant l'IDL sont représentées en rose clair (en amont) et en rose foncé (en aval). Pour Loop2 et Loop4, une vue arrière regardant dans le petit sillon est également affichée.

Rôle dans le cancer

Le rôle le plus important de MSH3 dans le cancer est la suppression des tumeurs par la réparation des mutations somatiques dans l'ADN qui se produisent à la suite de désappariements base-base et de boucles d'insertion/délétion. La perte d'expression et la surexpression de MSH3 peuvent entraîner des effets cancérigènes .

La surexpression de MSH3 peut entraîner des changements drastiques dans les niveaux relatifs d'e de MutSα et MutSβ. Normalement, MutSβ est exprimé à des niveaux relativement faibles dans toutes les cellules tandis que MutSα est présent à des niveaux élevés. Alors que les deux protéines ont une fonction redondante dans les réparations base-base, MutSα effectue généralement des réparations de mésappariement base-base et effectue également des réparations sur les boucles d'inertie/délétion courtes les plus courantes. Lorsque MSH3 est fortement surexprimé, il agit comme un séquestre pour MSH2 et les niveaux relatifs de MutSβ et MutSα changent considérablement à mesure que les protéines MSH6 non appariées se dégradent et que MutSα s'épuise. MutSβ peut compenser quelque peu la perte des fonctions de correction de désappariement base-base, mais n'est pas adapté à la réparation de nombreuses boucles d'insertion/suppression courtes de 1 à 2 paires de bases. Cela conduit à un taux accru d'instabilités microsatellites et à des taux accrus de mutations somatiques.

Cet effet est directement lié au cancer humain sous forme de résistance aux médicaments. L' amplification du gène DHFR est l'une des réponses de résistance courantes au méthotrexate , un médicament couramment utilisé pour traiter la leucémie lymphoïde aiguë chez l' enfant et diverses autres tumeurs . L'amplification de la DHFR conduit à une surexpression de MSH3 et a été liée à une récidive pharmacorésistante dans le cancer.

En revanche, la perte de MSH3 peut entraîner un déficit de réparation des mésappariements et une instabilité génétique qui ont été identifiés comme des effets cancérigènes particulièrement courants dans le cancer colorectal humain. Les mutations provoquant le knockdown de MSH3 peuvent entraîner une diminution de la capacité des cellules à réparer de longues boucles d'insertion/délétion provoquant des instabilités microsatellites (MSI) dans le génome et permettant une augmentation des taux de mutation somatique. Les altérations microsatellites élevées au niveau des répétitions tétranucléotidiques sélectionnées (EMAST) sont un type de MSI où les loci contenant des répétitions tétranucléotidiques AAAG ou ATAG sont particulièrement instables. Les phénotypes EMAST sont particulièrement fréquents, avec près de 60% des cancers colorectaux sporadiques présentant des niveaux élevés d'EMAST liés à un taux élevé de cellules déficientes en MSH3 dans les tumeurs.

Les références

Lectures complémentaires